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MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監測系統
更新時(shí)間:2020-04-07
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MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監測系統是由世界的美國Sable Systems International動(dòng)物代謝測量公司生產(chǎn)的一款16通道、高分辨率及自動(dòng)化的果蠅代謝監測儀器,可廣泛用于代謝紊亂造成的各種流行疾病治療的機理研究。
價(jià)格區間5千-1萬(wàn)產(chǎn)地類(lèi)別進(jìn)口
應用領(lǐng)域醫療衛生,環(huán)保,化工,生物產(chǎn)業(yè),農業(yè)

 

MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監測系統

 

  果蠅作為經(jīng)濟實(shí)用的模式動(dòng)物,可用于中樞神經(jīng)系統紊亂、炎癥性病變、心血管疾病、癌癥以及糖尿病等治療研究,而這些疾病的發(fā)生從生理上來(lái)說(shuō)都與生物個(gè)體長(cháng)期的代謝功能異常密切相關(guān)。

  MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監測系統是由世界的美國Sable Systems International動(dòng)物代謝測量公司生產(chǎn)的一款16通道、高分辨率及自動(dòng)化的果蠅代謝監測儀器,可廣泛用于代謝紊亂造成的各種流行疾病治療的機理研究。

MAVEn™果蠅代謝系統作為果蠅代謝分型監測方面應用很廣泛的產(chǎn)品,主要具備以下特點(diǎn):

  1.  改變了傳統的單只果蠅的封閉或半封閉式測量模式,實(shí)現每個(gè)測量室都有
      實(shí)時(shí)氣流通過(guò)的*開(kāi)放式測量,避免了測量時(shí)內出現缺氧(hypoxia)
      或高碳酸血癥(hypercapnia),可一次測量多達16只個(gè)體。

  2.  15秒就可以完成一只果蠅的代謝監測,這代表了目前技術(shù)能達到的極限。

  3.  數據可以通過(guò)SD卡把帶時(shí)間標簽的CSV格式直接導出到電腦。

  4.  可選配FLIC果蠅覓食、AD-2果蠅活動(dòng)、氣體(氧氣、二氧化碳、水汽以
      及其它可檢測氣體)等監測單元。

  5.  參考文獻多,高達4萬(wàn)多篇,屬于前沿科技。

具體性能指標:

  1.  氣流流速:5毫升/分鐘-200毫升/分鐘,質(zhì)量流量計,PID精確控制,精度
      為2%。
  2.  昆蟲(chóng)測量時(shí)間:15秒-3小時(shí)可程序化選擇;基線(xiàn)測量時(shí)間:15秒-3小時(shí)可
      程序化選擇。
  3.  氣壓測量:分辨率1Pa,精度0.05%。
  4.  光照水平:0.1-5000勒克斯。
  5.  溫度測量:0-50℃,分辨率0.01℃,精度±0.25℃。
  6.  模擬輸入:6個(gè)模擬輸入,16bit分辨率,-5至+5伏電壓信號,可接SSI其
      它儀器或實(shí)驗室其它氣體分析儀等。
  7.  數據格式:CSV格式;數據存儲:SD卡,大支持32G的SD卡。
  8.  雙通道高精度差分式氧氣分析測量?jì)x:測量技術(shù):燃料電池原理氧傳感
      器,雙通道;氧氣濃度量程0-100%(用戶(hù)可自定義設置5個(gè)級別);差值
      量程±50%;精度0.1%(O2濃度2-100%時(shí));分辨率0.0001%O2;漂移< 
      0.01%每小時(shí)(溫度恒定情況下);響應時(shí)間小于7秒;24小時(shí)漂移<0.01%
      ;20分鐘噪音<3ppm RMS;數字過(guò)濾(噪音)0-40秒可調,增幅0.2秒,
      內置A/D轉換器分辨率16bits;溫度、壓力補償;傳感器溫度測量范圍0-60
      ℃,精度0.2℃,分辨率0.001℃;大氣壓測量分辨率0.0001kPa,精度為
      滿(mǎn)量程的0.05%;適用流量范圍5-2000mL/min;4通道模擬信號輸出(0-5V 
      BNC)可輸出通道1的氧氣濃度,通道2的氧氣濃度,1和2的差值,大氣壓;
      數字輸出:RS-232;具4行文字LCD顯示屏,帶背光,可同時(shí)顯示2個(gè)通道
      的氧氣含量和它們的差值,以及大氣壓;*PID(Proportional-
      Integral-Derivative)溫控單元,保證內部氧氣傳感器溫度恒定,進(jìn)一
      步提高了氧氣測量的精度和穩定性;供電12-24VDC,8A,配交流電適配器
      ;工作溫度:5-45℃,無(wú)冷凝;重量6.4kg;尺寸43.2cm×35.6cm×20.3cm


  9.  超高精度二氧化碳分析測量?jì)x:用于測量微小昆蟲(chóng)(比如果蠅、蚊子
      等)或蜱螨類(lèi)微小動(dòng)物的呼吸代謝,可同時(shí)測量CO2濃度和H2O濃度;
      CO2量程0-3000ppm;準確度<1%;分辨率0.01ppm;H2O量程0-60mmol
      /mol;準確度1%;

  10. 二次抽樣單元:內置氣泵、精密針閥、質(zhì)量流量計,可用來(lái)給氣流樣本
      做二次抽樣,也可單獨作為氣源使用;流量范圍5-2000mL/min;精度為
      讀數的10%;分辨率1mL/min;具備2行顯示LCD顯示屏;帶0-5V BNC模擬
      信號輸出;數字輸出RS-232;供電12-15VDC,20-350mA,配交流電適配
      器;工作溫度:0-50℃,無(wú)冷凝;重量1.5kg;尺寸16cm×13cm×20cm;

 

 

產(chǎn)地:美國

 

文獻案例:

2016年已發(fā)表的果蠅有關(guān)文獻中,使用SSI果蠅代謝監測系統的達14篇,201511篇,截止目前相關(guān)文獻共計500多篇。

1.    Andrew N R, Ghaedi B, Groenewald B. The role of nest surface temperatures and the brain in influencing ant metabolic rates[J]. Journal of Thermal Biology, 2016, 60: 132-139.

2.    Baaren J, Dufour C M S, Pierre J S, et al. Evolution of lifehistory traits and mating strategy in males: a case study on two populations of a Drosophila parasitoid[J]. Biological Journal of the Linnean Society, 2016, 117(2): 231-240.

3.    Bartholomew N R, Burdett J M, VandenBrooks J M, et al. Impaired climbing and flight behaviour in Drosophila melanogaster following carbon dioxide anaesthesia[J]. Scientific reports, 2015, 5.

4.    Basson C H, Clusella-Trullas S. The behavior-physiology nexus: behavioral and physiological compensation are relied on to different extents between seasons[J]. Physiological and Biochemical Zoology, 2015, 88(4): 384-394.

5.    Bosco G, Clamer M, Messulam E, et al. EFFECTS OF OXYGEN CONCENTRATION AND PRESSURE ON Drosophila melanogaster: OXIDATIVE STRESS, MITOCHONDRIAL ACTIVITY, AND SURVIVORSHIP[J]. Archives of insect biochemistry and physiology, 2015, 88(4): 222-234.

6.    Casas J, Body M, Gutzwiller F, et al. Increasing metabolic rate despite declining body weight in an adult parasitoid wasp[J]. Journal of insect physiology, 2015, 79: 27-35.

7.    Correa Y D C G, Faroni L R A, Haddi K, et al. Locomotory and physiological responses induced by clove and cinnamon essential oils in the maize weevil Sitophilus zeamais[J]. Pesticide biochemistry and physiology, 2015, 125: 31-37.

8.    DeVries Z C, Kells S A, Appel A G. Estimating the critical thermal maximum (CT max) of bed bugs, Cimex lectularius: Comparing thermolimit respirometry with traditional visual methods[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 2016, 197: 52-57.

9.    Dreiss A N, Séchaud R, Béziers P, et al. Social huddling and physiological thermoregulation are related to melanism in the nocturnal barn owl[J]. Oecologia, 2016, 180(2): 371-381.

10.  Duun Rohde P, Krag K, Loeschcke V, et al. A Quantitative Genomic Approach for Analysis of Fitness and Stress Related Traits in a Drosophila melanogaster Model Population[J]. International Journal of Genomics, 2016, 2016.

11.  Fischer K E, Gelfond J A L, Soto V Y, et al. Health effects of long-term rapamycin treatment: the impact on mouse health of enteric rapamycin treatment from four months of age throughout life[J]. PloS one, 2015, 10(5): e0126644.

12.  Groom D J E, Toledo M C B, Welch K C. Wingbeat kinematics and energetics during weightlifting in hovering hummingbirds across an elevational gradient[J]. Journal of Comparative Physiology B, 2016: 1-18.

13.  Gudowska A, Boardman L, Terblanche J S. The closed spiracle phase of discontinuous gas exchange predicts diving duration in the grasshopper, Paracinema tricolor[J]. Journal of Experimental Biology, 2016: jeb. 135129.

14.  Haddi K, Mendes M V, Barcellos M S, et al. Sexual Success after Stress? Imidacloprid-Induced Hormesis in Males of the Neotropical Stink Bug Euschistus heros[J]. PloS one, 2016, 11(6): e0156616.

15.  Haddi K, Oliveira E E, Faroni L R A, et al. Sublethal exposure to clove and cinnamon essential oils induces hormetic-like responses and disturbs behavioral and respiratory responses in Sitophilus zeamais (Coleoptera: Curculionidae)[J]. Journal of economic entomology, 2015: tov255.

 

 

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