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產(chǎn)地類(lèi)別 | 國產(chǎn) | 應用領(lǐng)域 | 環(huán)保,農業(yè),綜合 |
1、概述
根系是植物地下部分為適應陸地生活長(cháng)期進(jìn)化而形成的營(yíng)養器官,具有支撐地上部分的基本作用,不僅在水、礦物質(zhì)和碳水化合物的吸收、轉化和儲存中發(fā)揮著(zhù)重要的作用,還能夠穩定植物體并與土壤形成物理和化學(xué)聯(lián)系。有研究學(xué)者認為,優(yōu)良根系的品種有利于提高產(chǎn)量穩定性、資源利用效率及對環(huán)境脅迫的抵抗力[1],根系也被作為育種目標。根系的形態(tài),例如根長(cháng)、根系體積、根系直徑和根干物質(zhì),可以反映根系的健康情況。當植物受到脅迫時(shí),根系會(huì )產(chǎn)生一系列生長(cháng)和發(fā)育、形態(tài)、生物量以及生理生化代謝變化以適應脅迫條件。因此,更好地了解植物根系和根際過(guò)程有助于提高植物生產(chǎn)和可持續土壤管理的資源效率。
根系研究的關(guān)鍵在于使植物“隱藏的一半"能被可視化和量化。
傳統植物根系的研究方法包括挖掘法、定位法、土鉆法等,通過(guò)挖根、洗根等操作后對根系進(jìn)行形態(tài)學(xué)、生理生化等方面的研究,此類(lèi)方法不僅破壞性大、耗時(shí)長(cháng)、取樣成本高,且存在一定的局限性[2]。近年來(lái),無(wú)損成像方法在植物科學(xué)中變得越來(lái)越流行。傳統上局限于RGB成像的高通量應用正在向更寬的光譜范圍發(fā)展,從而能夠對根際成分進(jìn)行化學(xué)成像[3,4],也為地下根系的研究提供了新的途徑。
為了解決傳統根系研究方法所存在的缺陷并方便對根系進(jìn)行成像,市場(chǎng)上出現了一系列產(chǎn)品,如人工培養基(瓊脂、發(fā)芽紙、水培等)培養植物幼苗的方法,但該方法植株的生長(cháng)條件受到人們的質(zhì)疑;微根窗技術(shù)是一種非破壞性、定點(diǎn)直接觀(guān)察和研究植物根系的方法,是活體根系監測、根系動(dòng)態(tài)生長(cháng)監測最主要的方法之一。但該方法的缺陷在于窗面及觀(guān)察深度都比較有限,且在根系生長(cháng)過(guò)程中可能會(huì )產(chǎn)生大量細根圍繞在玻璃管周?chē)?,影響觀(guān)測的準確性[5-7]。因此,基于根窗技術(shù),填土根箱成像系統應運而生,用于植物根系成像。
基于根箱栽培的植物根系表型RGB成像存在一個(gè)缺陷,即需要依賴(lài)于根與土壤足夠的對比度才能進(jìn)行自動(dòng)分割。而高光譜成像數據能夠克服根與土壤分割困難的問(wèn)題,能夠對根系表型及生化性狀成分進(jìn)行成像分析。
根系表型研究方法對比
根系研究方法 | 優(yōu)點(diǎn) | 缺點(diǎn) | 代表性?xún)x器 |
挖掘法、土鉆法 | 經(jīng)濟成本低 | 破壞性;耗時(shí)耗力; | WinRhizo洗根圖像分析系統 |
微根窗法 | 非破壞性; 定點(diǎn)觀(guān)測 | 窗面尺寸小 | MS-190超高清微根窗相機系統 |
根箱栽培法 -RGB成像 | 非破壞性; 可實(shí)現高通量分析 | 圖像自動(dòng)分割依賴(lài)于根與土壤的對比度 | PlantScreen高通量植物表型系統 |
根箱栽培法 -高光譜成像 | 自動(dòng)圖像分割; 可對根系成分進(jìn)行化學(xué)成像 | 經(jīng)濟成本略高 | RhizoTron®植物根系高光譜成像分析系統 |
基于此,易科泰生態(tài)技術(shù)公司結合近幾年來(lái)高光譜成像技術(shù)創(chuàng )新應用(易科泰 SpectrAPP ® 項目)實(shí)驗研究,開(kāi)發(fā)了一款RhizoTron®植物根系高光譜成像分析系統,該系統基于根窗技術(shù),可對RhizoBox根盒培養的植物根系進(jìn)行原位非損傷表型成像分析,具備多功能高光譜成像分析功能,可對植物根系進(jìn)行高光譜和自發(fā)光熒光成像。能夠實(shí)現植物根系進(jìn)行原位表型高光譜成像分析和動(dòng)態(tài)監測??蓱糜谥仓旮党上穹治?、抗性篩選及遺傳育種、病蟲(chóng)害脅迫及干旱研究、土壤結構及養分研究等領(lǐng)域。
2、RhizoTron®植物根系高光譜成像分析系統
2.1 系統介紹
RhizoTron®植物根系高光譜成像分析系統可對生長(cháng)于RhizoBox根盒(帶根窗)的作物根系進(jìn)行高光譜成像分析和UV激發(fā)生物熒光成像分析(選配),可選配Thermo-RGB成像分析及冠層表型成像分析。
RhizoTron植物根系高光譜成像分析系統由主機系統和高光譜成像系統組成,其中主機系統包括系統平臺(主機箱)、控制單元、樣品托、數據處理服務(wù)器等組成;光譜成像系統由光譜成像單元(包括成像傳感器、光源、云臺等)和自動(dòng)掃描軸組成。
2.2 功能特點(diǎn)
1)基于RhizoTron®根窗技術(shù)的高光譜成像分析技術(shù),配有植物培養模塊,由樣品托盤(pán)、適配器、不同規格尺寸RhizoBox根系觀(guān)測培養根盒組成,或自己制作培養根盒;可選配多通道智能LED培養臺
2)標配為60度傾斜自動(dòng)掃描成像(與植物培養角度一致),同時(shí)對RhizoBox根系和幼苗進(jìn)行高光譜成像分析和RGB成像分析,可選配其它角度如45度、70度和90度(垂直掃描成像)
3)可對根系進(jìn)行UV-MCF紫外光激發(fā)生物熒光高光譜成像,以研究分析根系活動(dòng)及根系與土壤互作關(guān)系、熒光假單胞菌等AvrahamAlonyandRaphaelLinker,2013);或選配根系Thermo-RGB成像分析
4)可選配頂部冠層RGB成像分析、紅外熱成像分析、高光譜成像分析、葉綠素熒光成像分析(可選配適于正常培養盆的樣品托)
5)可選配iPOT數字化植物培養盆或RhizoBox根系培養盒,持續監測土壤水分溫度、重量、植物生長(cháng)、光合效率、PI(performanceIndex)、莖流等生理生態(tài)指標,可自動(dòng)采集土壤滲漏水并進(jìn)行土壤營(yíng)養鹽分析
6)模塊式結構,具備強大的系統擴展功能,系統平臺自動(dòng)萬(wàn)向腳輪,方便移動(dòng)
7)可遠程控制(選配)、自動(dòng)運行數據采集存儲等功能
2.3 技術(shù)指標
1)控制單元為嵌入式操作系統,可進(jìn)行雙重控制(觸控屏+PC端全中文GUI軟件),實(shí)現遠程操控相機及平臺
2)自動(dòng)掃描軸推掃速度與精度:1-40mm/s,移動(dòng)精度1mm,有效掃描范圍:標配100cm
3)高光譜成像(標配400-1000nm,可選配900-1700nm)可成像分析植被生理生化指標、健康指數、光合利用效率、植被脅迫、水分、氮素等指數。配備PhenoRoot根系分析軟件,如需對地上部分進(jìn)行同時(shí)分析,可選配SpectrAPP分析軟件
4)標配RGB彩色成像:分辨率2448×2048像素,配備專(zhuān)業(yè)植物根系分析軟件
5)SpectrAPP®高光譜成像分析軟件:進(jìn)行光譜融合、ROI選區分析、光譜分析、頻率直方圖、自動(dòng)識別不同波段峰值,可分析近百種光譜指數,根據需求定制添加光譜指數,同時(shí)能夠分析根系表型數據
6)PhenoRoot根系分析軟件,可分析根長(cháng)、根系最大寬度、凸包面積、根系總長(cháng)、根系面積(生物量)、根系剖面分析(根系密度)等
7)Thermo-RGB成像融合分析(選配),包括Thermo-RGB融合分析軟件,紅外熱成像分辨率:640×512像素;測量溫度范圍:-25℃-150℃;光譜范圍:7.5-13.5μm
8)多通道智能LED培養臺,RGBW四通道智能調整LED光源,0-100%可調,可模擬晝夜節律、不同光配方等,最大光強300μmol/m2·s
9)葉綠素熒光成像單元(選配),專(zhuān)業(yè)高靈敏度葉綠素熒光成像CCD,幀頻50fps,分辨率720×560像素,像素大小8.6×8.3µm,可自動(dòng)運行Fv/Fm、Kautsky誘導效應、熒光淬滅分析、光響應曲線(xiàn)等protocols,自動(dòng)測量分析50多個(gè)葉綠素熒光參數,包括:Fv/Fm、Fv’/Fm’、Y(II)、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等,自動(dòng)形成葉綠素熒光參數圖
10)系統平臺規格:標配約145cm×60cm×160cm(長(cháng)×寬×高)、重量約50kg
3、應用案例
3.1 甜菜根系RGB及高光譜成像分析:
以甜菜為實(shí)驗對象進(jìn)行了實(shí)驗,對其根系進(jìn)行RGB成像和高光譜成像(900-1700nm),分別進(jìn)行了形態(tài)分析和生化性狀進(jìn)行分析[8]。
1)形態(tài)分析:以手動(dòng)分割作為參考,使用RGB和高光譜圖像跟蹤甜菜根系的生長(cháng)、形態(tài)和結構,發(fā)現基于RGB自動(dòng)分割并不能很好的區分老根和土壤,跟蹤根系總根長(cháng)誤差為6.94%;高光譜成像通過(guò)光譜比率獲得根系的二值圖像進(jìn)而對根系長(cháng)度進(jìn)行分析,誤差僅為1.5%。使用紫外燈(UV)與模擬太陽(yáng)光照射得到的根系可視化圖像,發(fā)現在明亮背景下UV圖像更易識別根系。
左:RGB原始圖像;中:(A)使用繪圖板手動(dòng)分割根系,(B)頂部分割不良的舊根軸區域,(C)圖像底部正確分割的新根軸,(D)基于RGB獲得的二值圖像;右:基于高光譜獲得的二值圖像
UV和模擬太陽(yáng)光根系可視化圖像。(A): UV;(B): 模擬太陽(yáng)光
2)生化性狀分析:對不同發(fā)生位置及成熟度的根系和土壤的平均光譜進(jìn)行分析,發(fā)現三種根系光譜曲線(xiàn)存在顯著(zhù)差異,且1100nm附近新側根與主根出現吸收峰,而老根并未出現。但老根與土壤反射曲線(xiàn)趨勢較一致,在水分吸收區域(1450nm)附近,根系光譜斜率高于土壤。同時(shí),它使用不同含水量土壤校準根盒的平均光譜進(jìn)行校準,從而繪制根箱上水分分布圖。
3.2小麥根系RGB及高光譜成像分析
以小麥為實(shí)驗對象,對植株進(jìn)行扦插處理,扦插后14、28、47、94、101和201天對根箱的上三分之一進(jìn)行高光譜成像(900-1700nm)和RGB成像,分別進(jìn)行了形態(tài)分析和生化性狀進(jìn)行分析[9]。
1)形態(tài)分析:使用WinRhizo對根長(cháng)度進(jìn)行結構量化,以手動(dòng)分割作為參考,分別使用高光譜圖像和RGB圖像對根系可見(jiàn)根長(cháng)度進(jìn)行預測,結果表示,基于RGB分割為83.4%,光譜分割為77.0%。但兩種分割方法的斜率沒(méi)有顯著(zhù)差異(P=0.225)。表明兩種方法在預測此處使用的基質(zhì)的可見(jiàn)根長(cháng)度方面具有相似的性能。
2)生化性狀分析:基于光譜特征,使用決策樹(shù)模型對根像素的徑級類(lèi)別進(jìn)行預測,其訓練集為r=0.86,驗證集r=048;基于一階導數差分光譜(1649-1447nm)構建根系腐爛時(shí)間指數模型,使用修剪后28天和101天的光譜數據作為驗證集,其r2=0.96。
3.3 土壤含水量估測及根腐病識別
以甜菜為實(shí)驗對象對其根系進(jìn)行高光譜成像(900-1700nm),同時(shí)測定與實(shí)驗相同土壤的根箱中的不同土壤含水量及高光譜成像,以此作為訓練集對含水量模型進(jìn)行訓練,對根箱的每個(gè)土壤像素的含水量進(jìn)行預測;以油用蘿卜作為實(shí)驗對象,使用化學(xué)計量分析對根系不同時(shí)間后腐爛的光譜特征進(jìn)行識別,通過(guò)光譜的時(shí)間變化推斷根系腐爛情況[10]。
3.4不同基因型扁豆霉菌根腐病的RGB和高光譜成像評估
以不同基因型扁豆為實(shí)驗對象,分別進(jìn)行RGB成像和高光譜成像(550-1700nm),研究高通量表型技術(shù)評估霉菌根腐病的嚴重程度,以快速鑒別耐藥基因型。設置對照組和實(shí)驗組,培養14日后實(shí)驗組接種黃芽孢桿菌,對照組施以清水。接種14日后使用0-5疾病評分量表對根系進(jìn)行評分,作為地面參考數據[11]。
RGB圖像:通過(guò)提取特征變量對植物生物量研究,發(fā)現投影面積與植物生物量有很強的相關(guān)性,與地下生物量相關(guān)性高達0.9,地上生物量相關(guān)性為0.84;對根系病害程度進(jìn)行預測,發(fā)現其R2達到0.67,而通過(guò)地上部特征變量進(jìn)行預測,其R2僅達到0.23。
高光譜圖像:通過(guò)提取感興趣區的光譜,發(fā)現從地上樣品的高光譜反射曲線(xiàn)來(lái)看,健康和感染的樣品光譜反射曲線(xiàn)相差較小,而根系的光譜曲線(xiàn)差異較顯著(zhù)。使用歸一化差異光譜指數(NDSI)對根系疾病程度進(jìn)行預測,其R2達到0.54,使用地上部光譜特征進(jìn)行預測,其R2僅為0.27。
3.5 油菜重金屬鉛(Pb)含量的高光譜估測
以油菜為實(shí)驗對象,對葉片和根系分別進(jìn)行高光譜成像,對根系圖像進(jìn)行比值運算(根部:861.96/480.46nm),油菜葉片和根的分割閾值t分別為1.3和1.6,使根系與背景進(jìn)行圖像分割。分別建立支持向量機(SVM)和SAE深度神經(jīng)網(wǎng)絡(luò )對樣品中的鉛(Pb)含量建立模型并預測,發(fā)現SAE深度神經(jīng)網(wǎng)絡(luò )模型精度較高。在SAE模型的基礎上使用遷移學(xué)習的方法得到T-SAE模型,并對油菜葉片和根系中的Pb含量進(jìn)行預測,發(fā)現其精度有所提升,油菜葉片達到0.92,根系達0.93?;诖丝梢园l(fā)現高光譜成像技術(shù)結合深度神經(jīng)網(wǎng)絡(luò )能夠對油菜植物中的重金屬Pb進(jìn)行定性定量檢測[12]。
3.6 野生植物幼苗根系高光譜成像分析
易科泰EcoTech®實(shí)驗室技術(shù)人員以一株野生型元寶槭幼株為樣本,采集900-1700nm高光譜數據,并對其進(jìn)行光譜成像分析及根系形態(tài)分析。
4、參考文獻
[1] Kutschera, L. Wurzelatlas mitteleurop?ischer Ackerunkr?uter und Kulturpflanzen. DLG-Verlags-GmbH, Frankfurt am Main (1960).;Kenrick, P., & Strullu-Derrien, C. Theorigin and early evolution of roots. Plant Physiol. 166, 570-580 (2014).
[2] 秦天元, 孫超, 畢真真等. 植物根系成像技術(shù)研究進(jìn)展及馬鈴薯根系研究應用前景[J]. 核農學(xué)報, 2019, 33(02): 412-419.
[3] Dhondt S, Wuyts N, Inzé D. Cell to whole-plant phenotyping: the best is yet to come. TrendsPlant Sci. 2013; 18:428–39.
[4] Pierret A. Multi-spectral imaging of rhizobox systems: new perspectivesfor the observation and discrimination of rhizosphere components. Plant Soil. 2008; 310: 263–8.
[5] Vamerali T, Ganis A, Bona S, Mosca G. An approach to minirhizotron root image analysis[J]. Plant and Soil, 1999, 217( 1/2) : 183-193.
[6] Johnson M G, Tingey D T, Phillips D L, Storm M J. Advancing fine rootresearch with minirhizotrons [J].Environmental and Experimental Botany, 2001, 45( 3) : 263-289.
[7] 秦天元, 孫超, 畢真真等. 植物根系成像技術(shù)研究進(jìn)展及馬鈴薯根系研究應用前景[J]. 核農學(xué)報, 2019, 33(02):412-419.
[8] Gernot B , Mouhannad A , Alireza N , et al. RGB and Spectral Root Imaging for Plant Phenotyping and Physiological Research: Experimental Setupand Imaging Protocols. [J]. Journal of visualized experiments : JoVE, 2017, (126).
[9] Gernot B, Alireza N, Thomas A, et al. Hyperspectral imaging: a novel approach for plant root phenotyping.[J]. Plantmethods, 2018, 14(1).
[10] Gernot B , Mouhannad A , Alireza N . Root System Phenotying ofSoil-Grown Plants via RGB and Hyperspectral Imaging. [J].Methods in molecularbiology (Clifton, N.J.), 2021, 2264245-268.
[11] Advanced Imaging for Quantitative Evaluation of Aphanomyces RootRot Resistance in Lentil[J]. Frontiers in Plant Science, 2019, 10.
[12] Nakaji T, Noguchi K, Oguma H. Classification of rhizosphere components using visible–near infrared spectral images. Plant Soil. 2008; 310: 245–61.