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FC 2000顯微葉綠素熒光成像系統
更新時(shí)間:2018-03-16
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FC 2000顯微葉綠素熒光成像系統將GFP和葉綠素熒光動(dòng)力學(xué)成像的全部功能擴展到了單細胞和亞細胞結構水平。所有傳統的熒光參數都可以以測微計的分辨率成像,因此對單個(gè)細胞、單個(gè)葉綠體甚至基粒-基質(zhì)類(lèi)囊體片段的研究都可以實(shí)現。

 

FC 2000顯微葉綠素熒光成像系統
FC 2000顯微葉綠素熒光成像系統將GFP和葉綠素熒光動(dòng)力學(xué)成像的全部功能擴展到了單細胞和亞細胞結構水平。所有傳統的熒光參數都可以以測微計的分辨率成像,因此對單個(gè)細胞、單個(gè)葉綠體甚至基粒-基質(zhì)類(lèi)囊體片段的研究都可以實(shí)現。
應用領(lǐng)域
·         植物光合特性和代謝紊亂篩選
·         生物和非生物脅迫的檢測
·         植物抗脅迫能力或者易感性研究
·         代謝混亂研究
·         長(cháng)勢與產(chǎn)量評估
·         植物——微生物交互作用研究
·         植物——原生動(dòng)物交互作用研究
·         基因工程與分子生物學(xué)研究,GFP、BFP、YFP、CY3、CY5等示蹤成像
典型樣品
·         葉片切片
·         綠藻
·         藻青菌
·         葉綠體
·         類(lèi)囊體
·         其它
工作原理
植物熒光成像系統用于檢測植物發(fā)出熒光的動(dòng)態(tài)變化和空間分布,Kautsky效應過(guò)程、熒光淬滅及其它瞬時(shí)熒光過(guò)程(瞬變)都可被攝取,從而提供2維熒光圖像。測量與計算參數多達50多個(gè):F0, FM, FV, F0', FM', FV', QY(II),NPQ, ΦPSII, FV/FM, FV'/FM', RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合電子傳遞率ETR等。這些熒光參數圖像可用于研究植物的光合生理、優(yōu)良品種篩選及果實(shí)的成熟過(guò)程等等,還可研究因病變、衰老、環(huán)境脅迫或基因突變造成的熒光變化。
功能特點(diǎn):實(shí)驗過(guò)程和測量參數
·         葉綠素熒光與GFP、BFP、YFP、CY3、CY5等熒光成像
·         Meter功能
·         熒光誘導過(guò)程(Kausky效應)分析
·         葉綠素熒光淬滅過(guò)程(NPQ過(guò)程)分析
·         PAR吸收系數測定
·         QA再氧化過(guò)程分析
·         可測量與計算多達50個(gè)參數: Fo, FM, Fs, Fo’, FM’, FV’, QY(II), NPQ, FV/FM, FV’/FM’, Rfd, qN, qP, PAR-吸光系數, 電子傳遞速率(ETR), 及其它。
技術(shù)參數
·         F1/1.4目鏡,有不同放大倍數選擇(1.2x, 5x, 10x, 20x, 40x, 60x, 100x),測量區域zui大可達2x2cm(1.2倍),zui小達微米級
·         光源:藍色 LED (450nm),紅色 LED (630nm),UV LED (390nm) 及 IR 735nm (用于PAR、暗適應及 F0`)
·         測量光閃10µs - 100µs可調;光化學(xué)光可達3000µmol/m2.s;飽含光閃(脈沖)zui大可達8000µmol/m2.s,強度和持續時(shí)間(zui大達2s)可調
·         STF -單次翻轉飽和光閃,強度可達120,000 µmol(photons)/m².s ,100µs脈沖
·         顯微葉綠素熒光成像系統自帶濾光輪(濾波器輪)和紅外光源(IR 735nm)
·         可根據需要測量多種熒光參數達25個(gè)以上,用于Kautsky誘導效應、熒光淬滅、OJIP等測量分析研究
·         可根據客戶(hù)需求加接配置用于綠色熒光蛋白(GFP)成像。帶6位濾波輪的顯微葉綠素熒光成像系統可測量更復雜的參數,如GFP, BFP, YFP, CY3, CY5等
·         CCD檢測器帶寬:400 – 1000 nm
·         CCD 制式:512 x 512 像素; 可選 640 x 480 像素或 1392 x 1040 像素
·         像素尺寸:8.2 µm x 8.4 µm
·         A/D 轉換分辨率:12 位
·         光譜響應:540 nm處量子效率zui高(70 %),400 nm 和 650 nm 處轉降50 %
·         讀出噪音:低于12eRMS,典型10e
·         滿(mǎn)阱容量:大于 70,000 e (unbinned)
·         成像頻率:50 張圖片每秒
·         Bios:固件可升級
·         通訊方式:USB 2.0
·         電源輸入:Appr. 1100 W
·         供電電壓:90 – 240 V
   
 
操作軟件與實(shí)驗結果
·         內置常用測量程序
  • 用戶(hù)可自定義實(shí)驗程序,界面友好
·         可自動(dòng)重復測量
·         視野內單個(gè)植物或樣品的自動(dòng)識別與標記
·         視野內所有樣品數據的動(dòng)力學(xué)分析
·         多圖像處理工具
·         條形碼讀卡器支持,便于批量處理樣品
·         數據可導出為excel
·         Windows 2000, XP, Vista兼容
 
配置型號指南:
  • 1. Micro-FluorCam FC 2000-ST
    內含: CCD 相機; 簡(jiǎn)單顯微鏡架;光學(xué)組件;控制單元;高性能PC;激發(fā)光源;軟件包;使用手冊.
  • 2. Micro-FluorCam FC 2000-EN
    內含: CCD 相機;帶可更換可擴展組件的機械強化顯微鏡架(Olympus BX40);機械強化光學(xué)組件;控制單元;高性能PC;激發(fā)光源;軟件包;使用手冊.
  • 3. Micro-FluorCam FC 2000-MFW
    內含: 6位濾波輪; CCD相機;帶可更換可擴展組件的機械強化顯微鏡架(Olympus BX40);機械強化光學(xué)組件;控制單元;PC高性能PC;激發(fā)光源;軟件包;使用手冊.
  • 4. Micro-FluorCam FC 2000-EFW
    內含:6位*軟件控制的濾波輪; CCD相機;帶可更換可擴展組件的機械強化顯微鏡架(Olympus BX40);機械強化光學(xué)組件;控制單元;高性能PC;激發(fā)光源;軟件包;使用手冊.
  • 5. Kinetic Fluorescence Microscope FC 2000-Z 詳見(jiàn)FKM多功能熒光動(dòng)態(tài)顯微監測系統
典型應用:

Scheme of the Micro-FluorCam
 
 
產(chǎn)地:歐洲
參考文獻:
l           A microscope for two-dimensional measurements of in vivo chlorophyll fluorescence kinetics using pulsed measuring radiation, continuous actinic radiation, and saturating flashes . Kuepper H. et al, 2000. Photosynthetica
l           New insights into photosynthetic oscillations revealed by two-dimensional microscopic measurements of chlorophyll fluorescence kinetics in intact leaves and isolated protoplasts. Ferimazova N. et al. (2002): Photochemistry and Photobiology
l           Microscopy and single molecule detection in photosynthesis. Vacha F. et al, 2005. Micron
l           Stress-induced filament fragmentation of calothrix elenkinii (cyanobacteria) is facilitated by death of high-fluorescence cells. Adamec F, et al. (2005): Journal of Phycology
l           Identification of Photosystem I and Photosystem II enriched regions of thylakoid membrane by optical microimaging of cryo-fluorescence emission spectra and of variable fluorescence. Vacha F. et al, 2007. Micron

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